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      丁香園論壇資料整理:流式細(xì)胞周期檢測(cè)Q&A(二)_流式細(xì)胞術(shù) 丁香通

       昵稱5684302 2011-02-10
      丁香園論壇資料整理:流式細(xì)胞周期檢測(cè)Q&A(二)
      2008-08-06 00:00   來(lái)源:丁香園   點(diǎn)擊次數(shù): 4117 關(guān)鍵詞: 流式細(xì)胞術(shù) 細(xì)胞周期 Q&A

      1、Q:要做胃粘膜組織的DNA含量及倍體檢查,但取材后要等幾個(gè)星期才會(huì)做流式細(xì)胞術(shù)檢查,請(qǐng)問(wèn):胃組織要怎樣保存好呢?用低溫保存,還是用乙醇固定?或者固定后再低溫下保存?

      A:我做過(guò)乳腺細(xì)胞的DNA含量測(cè)定,取得組織以后,先處理成單細(xì)胞懸液,然后再加70%冰乙醇固定,要保證冰乙醇的最終濃度為50%,這樣固定的細(xì)胞懸液可以至少保存12小時(shí),最多可保存一個(gè)月,上機(jī)檢測(cè)前再加PI綜合染液。我就是這樣做的,保存了將近三個(gè)星期,結(jié)果還可以,變異系數(shù)為5%.

      2、實(shí)驗(yàn)中想用PI分析細(xì)胞周期及凋亡率,請(qǐng)教幾個(gè)問(wèn)題:

      Q:(1)所用的RNAs酶用什么配制呢?用PBS配嗎?

      A:RNaseA用PBS配制沒(méi)有問(wèn)題,但是注意要沸水浴去除DNase的活性。

      Q:(2)測(cè)細(xì)胞周期和凋亡率時(shí)都要用RNAs酶,可以一起檢測(cè)嗎?

      A:用流式細(xì)胞儀測(cè)定時(shí)細(xì)胞周期和凋亡率是同時(shí)測(cè)定的,不用擔(dān)心。

      Q:(3)Triton-x-100是固定劑吧,用了70%的冷乙醇(是4℃嗎?),是不是就不用Triton-x-100固定了?

      A:Triton X-100是起透化作用的,不是固定劑,可以用75%的乙醇于-20度固定。

      Q:(4)還要設(shè)什么內(nèi)參標(biāo)準(zhǔn)(5%雞紅細(xì)胞)嗎?

      A:對(duì)照肯定是需要的,這個(gè)根據(jù)自己的需要進(jìn)行設(shè)置。

      Q:(5)不用試劑盒行不行???

      A:完全可以不用試劑盒。

      以下提供一個(gè)自己的實(shí)驗(yàn)步驟供參考:

      (1)200×g離心10min收集細(xì)胞;

      (2)棄去上清,PBS漂洗一次,將細(xì)胞重懸于預(yù)冷的80%乙醇中,-20°C固定24h以上;

      (3)進(jìn)行流式細(xì)胞儀檢測(cè)前,200×g離心10min收集固定后的細(xì)胞;

      (4)PBS洗滌一次,200×g離心10min收集細(xì)胞;

      (5)將細(xì)胞重懸于含100ug/ml RNase A和50ug/ml PI的PBS中,室溫孵育30min;

      (6)將經(jīng)PI染色和RNase A消化后的細(xì)胞懸液用300目的尼龍膜過(guò)濾后即可利用流式細(xì)胞儀進(jìn)行細(xì)胞周期分布和凋亡細(xì)胞定量的分析。

      3、Q:流式檢測(cè)細(xì)胞周期時(shí)加RNA酶所需的溫度?

      A:其實(shí)有關(guān)RNA酶在凋亡檢測(cè)制樣過(guò)程中使用的必要性問(wèn)題尚有人持不同意見(jiàn),該觀點(diǎn)的人認(rèn)為RNA酶在環(huán)境中無(wú)所不在,常規(guī)制樣過(guò)程中所接觸的試劑和環(huán)境中的RNA酶已足以降解樣品中的RNA,所以為了簡(jiǎn)便實(shí)驗(yàn)操作,也有人不加RNA酶或如你所參考的方法將其與PI染液一起使用。不過(guò)經(jīng)典的方法還是“先加RNA酶37度孵育30min,然后加PI 4度孵育30min”。

      至于染色時(shí)使用4度,是因?yàn)榈蜏乜蓽p弱分子運(yùn)動(dòng),增強(qiáng)熒光染料結(jié)合的穩(wěn)定性和減少可能的熒光損耗。上流式前細(xì)胞用75%乙醇固定行嗎?

      4、Q:我養(yǎng)腫瘤細(xì)胞,測(cè)周期。看到帖子說(shuō)70%乙醇必須用PBS和乙醇配,用水配細(xì)胞會(huì)碎裂,有帖子說(shuō)PBS和乙醇配會(huì)出現(xiàn)絮狀物。上流式前細(xì)胞用75%乙醇固定,就用買來(lái)的現(xiàn)成的瓶裝75%乙醇,行嗎?必須那么嚴(yán)格嗎?

      A:先用冷PBS懸浮細(xì)胞,大約1-2ml,充分懸浮,使細(xì)胞充分分散成單細(xì)胞。之后緩慢加入無(wú)水乙醇,終濃度為70-75%乙醇。不直接加75%乙醇的原因是:直接加入乙醇會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞團(tuán)聚的現(xiàn)象,很難重懸成單細(xì)胞。乙醇固定之后沒(méi)有細(xì)胞沉淀。

      5、Q:我要做流式分析細(xì)胞周期,我大概收集了10的6次方細(xì)胞,但細(xì)胞在乙醇固定之后,還看到有細(xì)胞沉淀的,但PBS洗滌兩次之后,就基本沒(méi)什么細(xì)胞沉淀了,上機(jī)發(fā)現(xiàn)就發(fā)現(xiàn)不了細(xì)胞了。這是怎么回事???怎么解決這個(gè)問(wèn)題???

      A:很可能是洗細(xì)胞的過(guò)程中丟失了,解決辦法有:

      (1)盡量采用尖底的離心管和水平離心機(jī)

      (2)離心后盡量用吸管吸取上清,不要傾倒;吸上清時(shí)最好殘留1mm左右的水膜,不要吸完。

      (3)離心的轉(zhuǎn)速或時(shí)間可稍微增加一點(diǎn)兒

      (4)每次加抗體時(shí),吸頭最好不要接觸液面;混勻時(shí)最好不要用吸頭吹打,以免吸頭掛壁帶走部分細(xì)胞。

      6、Q:流式細(xì)胞PI單染中為什么用RNAse?

      A:在測(cè)細(xì)胞周期時(shí),因?yàn)橐呀?jīng)在細(xì)胞膜打孔了,PI很容易透過(guò)細(xì)胞膜和DNA結(jié)合,但RNA也是核酸,也會(huì)被染色,為避免干擾染色前需用RNAse降解RNA。這樣PI只染DNA,能精確以熒光強(qiáng)度反映DNA的含量。

      7、最近做了幾次流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞周期,發(fā)現(xiàn)有幾個(gè)問(wèn)題:

      Q:(1)我所用的是腫瘤細(xì)胞, 但是同樣的細(xì)胞類型,同樣的處理因素,雖然兩次獨(dú)立實(shí)驗(yàn)作出來(lái)的結(jié)果總體趨勢(shì)都是在某種藥物干預(yù)后,S期比例下降,但兩次結(jié)果S期比列具體數(shù)值相差很大,同樣,G2/M期在干預(yù)前后無(wú)變化,但兩次獨(dú)立實(shí)驗(yàn)數(shù)值卻相差很大,那么可以說(shuō),做流式是每次細(xì)胞狀態(tài)不一樣,結(jié)果也會(huì)相差很大,是不是細(xì)胞密度會(huì)對(duì)結(jié)果產(chǎn)生很大影響,那么如果細(xì)胞密度在60-70%時(shí)和細(xì)胞已經(jīng)長(zhǎng)滿(90%以上)也會(huì)導(dǎo)致各期數(shù)值的差異?如果是這樣,長(zhǎng)滿的細(xì)胞(不再增殖)是表現(xiàn)的G1或S或G2/M上升還是下降?

      A:應(yīng)該是兩批細(xì)胞在實(shí)驗(yàn)時(shí)本身所出周期不同所致,可以在實(shí)驗(yàn)前進(jìn)行細(xì)胞的同步化處理,減少批間差異。實(shí)驗(yàn)細(xì)胞應(yīng)處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,而不能是完全長(zhǎng)滿,一般在50~80%比較好。自然狀態(tài)下,不增殖的細(xì)胞應(yīng)該處于G0/G1期。

      Q:(2)其次就是結(jié)果分析,細(xì)胞周期特異性藥物如抗代謝藥作用后主要表現(xiàn)的是S期比例下降,細(xì)胞被阻滯在G1期,自然G1期比列升高。而有些植物藥如長(zhǎng)春堿類或紫杉醇類,主要作用于M期,那么結(jié)果是否表現(xiàn)為G2期比例升高,還是S期也相應(yīng)升高?還有就是細(xì)胞經(jīng)抗腫瘤藥物作用后反而出現(xiàn)的S期升高,可能是那些原因,如何分析?

      A:周期特異性藥物阻滯哪一期,哪一期就升高,不會(huì)使其它階段細(xì)胞增多。

      8、Q:我用流式做胃癌細(xì)胞周期分析時(shí)不出現(xiàn)S、G2/M峰?什么原因呢?自己分析可能為PI沒(méi)染上色,是不是染色時(shí)間太短呢?

      A:你用了多少PI染色多久呢?一般來(lái)說(shuō)30分鐘夠了.我覺(jué)得可能是打孔或者rna沒(méi)有處理掉沒(méi)有成功,染色時(shí)間并不是關(guān)鍵。

      9、Q:做流式細(xì)胞時(shí),PI 染色,PI的濃度應(yīng)該是多少?還有就是400目的篩網(wǎng)是什么?不用可以嗎?謝謝。

      A:100ug/ml,一般用400目的篩網(wǎng)是用來(lái)將粘在一起的細(xì)胞團(tuán)濾掉的,否則會(huì)出現(xiàn)人為的多倍體干擾,分析的時(shí)候需要的是單個(gè)的細(xì)胞,不過(guò)如果經(jīng)驗(yàn)豐富也可以gate掉的。如果你沒(méi)有條件,建議在染色之前將細(xì)胞彈的很散,再進(jìn)行染色

      10、Q:流式細(xì)胞儀觀察細(xì)胞周期樣品怎樣準(zhǔn)備?

      A:給你介紹一下我的實(shí)驗(yàn)方法,我做的是周期檢測(cè),要做平行樣,六孔板做的。

      (1)收集先棄液,將你要實(shí)驗(yàn)(你已經(jīng)處理好的)的細(xì)胞PBS洗兩次,加胰酶消化(注意:如果要是加藥物或者其他處理過(guò)的細(xì)胞,棄液和PBS洗液均收集);

      (2)加培養(yǎng)基終止消化,打勻在分別收到各自離心管中(注意,收集過(guò)程中及后續(xù)過(guò)程中槍頭不要混用,要不平行樣也就沒(méi)意思了);

      (3)離心,1000rpm,5min棄液;

      (4)4度PBS(1到2ml)洗兩次,離心,1000rpm,5min棄液;

      (5)加入負(fù)20度70%酒精(1到2ml)打勻,固定,至少半個(gè)小時(shí)以上,(不做的話,可放入4度冰箱保存2-3周問(wèn)題不大);

      (6)離心,1000rpm,5min棄酒精;

      (7)4度PBS(1到2ml)洗,離心1000rpm,5min棄液;

      (8)4度PBS(1到2ml)洗,打勻后,將細(xì)胞懸液用100 目的紗布直接過(guò)濾到流式檢測(cè)管中;

      (9)離心,1000rpm,5min棄液;

      (10)加PI染液染色(濃度為50ug/ml),PBS32.4ml ,PI 2.5mg,Rnase 0.5mg,(Triton-X-100 0.25ml,枸櫞酸鈉50mg,這兩我沒(méi)加也效果不錯(cuò))加PBS至50ml,4度避光保存數(shù)月。106細(xì)胞中加入1ml PI染液, 振蕩器振勻,避光染色至少30 min, 上機(jī)檢測(cè);

      (11)統(tǒng)計(jì)分析。

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