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      基因檢測血液樣本出現(xiàn)溶血質(zhì)量問題怎么辦?

       生物_醫(yī)藥_科研 2019-07-10

      我們在用血液樣本進行基因檢測的時候,有時候血液會出現(xiàn)溶血等質(zhì)量問題,這嚴重影響了樣本的正常檢測,給我們的工作帶來了極大困擾。那么溶血會產(chǎn)生什么影響?是什么因素導致溶血的?怎樣才能避免溶血事件的發(fā)生呢?

      溶血的影響

      紅細胞破裂,血紅蛋白逸出稱為紅細胞溶解,簡稱溶血,它可由多種理化因素和毒素引起。嚴重溶血下,標本不可用,血紅蛋白及其代謝產(chǎn)物可能抑制Taq酶活性,使PCR擴增效率明顯降低。

      圖1   4號、5 號樣本屬于溶血樣本,需要重新采血


      溶血的原因

      1、患者本身因素。若患者有自身溶血性貧血、高膽紅素血癥等疾病時,抽出的血液可能已為溶血狀態(tài)。

      2、穿刺困難。患者由于某些原因?qū)е卵鞑粫郴驀乐孛撍⑿菘?、惡病質(zhì)等造成末梢循環(huán)差,靜脈充盈不良,均可導致穿刺困難,采血時間延長,部分血液凝固,細胞機械破壞,造成溶血。

      3、操作不當。采血者在采血部位消毒液未干的情況下即進行穿刺,或采血時將止血帶扎得過緊、時間太長,或在采血時定位或進針不準,使得針尖在靜脈中反復進出,這些不當操作均可造成標本溶血。將血液注入試管時速度過快或混勻血液與抗凝劑的過程中動作過猛,造成紅細胞撞擊,導致紅細胞破裂。

      4、抽血器具不合格。臨床上所用的抽血器具一般為一次性塑料制品,不合格的塑料制品會因聚合不完全而具有毒性引起血標本溶血。若玻璃試管不干燥或不清潔也會造成溶血??鼓嚬苤锌鼓齽┢僖部蓪е氯苎?。

      5、存放、運送和分離不當。血標本采集好后未馬上送檢,放置時間過長,造成溶血。運送途中劇烈振蕩致使紅細胞撞擊破裂而溶血。離心速度太快,也可導致溶血。

      那如何才能避免溶血呢?科學規(guī)范的操作是非常必要的。

      血液采集、儲存、運輸

      1.采血管

      采血管常見有兩類:

      (1)cfDNA專用常溫采血管:特指Streck Cell-Free DNA BCT? Blood Collection Tubes (10ml) , 后文中用Streck cfDNA常溫采血管或Streck管指代。

      (2)EDTA管

      禁用肝素抗凝管:由于肝素使得DNA抽提得率降低并在DNA提取過程中難以去除,肝素也會導致PCR效率降低,因此cfDNA檢測血液采集禁用肝素抗凝管。

      2. 使用Streck cfDNA常溫采血管采集、儲存、運輸血液

      (1) 血液采集操作流程:

        1). 依據(jù) CLSI H3-A6 指南或當?shù)刂改喜杉o脈血

         防止回流: 由于Streck 管含有化學添加物,必須避免血液回流。為防止回流,應采取以下措施:

        a. 在采血過程中保持患者胳膊處于下方

        b. 保持采血管和管塞處于上方,防止采血管管內(nèi)容物觸及管塞或針的末端

        c. 在血液開始流入采血管時立即或在兩分鐘內(nèi)釋放止血帶

        2). 遵循 CLSI H3-A6 或當?shù)刂改匣驅(qū)嶒炇覝蕜t采血

        3). 采集10ml血液,完全填滿采血管

        4). 從適配器上取下采血管,握住采血管,立即輕柔顛倒10次。顛倒不充分或顛倒不及時均可能導致提取結(jié)果欠佳。一次完整顛倒包含手腕完全旋轉(zhuǎn)180度再折回,如下圖所示:

      圖2  采血管顛倒混勻

      (2)血液儲存及運輸

      為保證后續(xù)血漿分離及cfDNA提取質(zhì)量,Streck管禁止冷藏/冷凍血液標本,建議常溫保存及運輸(6-36℃)至指定實驗室。從采血至運輸?shù)綄嶒炇覚z測的時間間隔不超過3天。

      3. 使用EDTA管(10ml) 采集、儲存、運輸血液

      (1)遵循標準靜脈采血程序采集10ml血液, 輕柔顛倒6-8次以混勻標本,切勿搖晃.

      (2)禁止冷凍血液標本,建議4℃保存。

      (3)血液應盡快離心處理,1小時內(nèi)處理最佳,至多不超過2小時。本操作流程包括兩步離心,以防止最終樣本中出現(xiàn)基因組DNA/RNA污染。

      4. 采血量的要求

      (1)不同平臺對血漿量的要求量不一樣,一般要求采用 10mL 采血管,10ml 血液大約能分離出 4-5ml 血漿。

      (2)對同一患者,血漿量越多,所提取的DNA量就越多,其中含有的 cfDNA量也就越高,對檢測越有利

      圖3 對同一患者,血漿量越多,所提取的DNA量就越多,其中含有的 cfDNA量也就越高(Sherwood et al. 2016 PLoSONE)

      5. 血液采集后送到實驗室檢測所能允許的最大時間間隔

      (1)兩小時內(nèi)處理標本能最大程度避免血細胞破裂而造成基因組DNA (gDNA) 污染

      圖4   A. 2h 內(nèi)處理標本,不論采用 EDTA管還是 cfDNA BCT 管,DNA濃度均無顯著差異; B. 72h 內(nèi)處理標本,不論 EDTA管還是 cfDNA BCT 管,DNA 濃度較 2h 時均顯著提高,即 gDNA 污染增加(Sherwood et al. 2016 PLoSONE)

      (2)不能在兩小時內(nèi)處理標本時,cfDNA BCT(Streck)管 優(yōu)于 EDTA 管

      圖5  左圖,2h 內(nèi)處理標本,EDTA管和 cfDNA BCT 管無顯著差異; 右圖,72h內(nèi)處理標本時,EDTA 管DNA濃度顯著高于cfDNA BCT 管,即 EDTA 管中 gDNA 污染顯著高于 cfDNA BCT 管(Sherwood et al 2016 PLoSONE)

      (3)不同采血管所能允許的最大時間間隔

        1)Streck 管:從采血至運輸?shù)綄嶒炇覚z測的時間間隔不超過3天。

        2)EDTA 管:強烈建議在醫(yī)院離心,分離出血漿之后干冰運輸至實驗室。從采血至分離血漿至多不能超過2小時。

      6. 血液采集后送往實驗室檢測前的保存方式和條件

      (1)Streck 管:血液應該在室溫(6℃-36℃)儲存,在室溫(6℃-36℃)環(huán)境下運輸至實驗室。

      (2)EDTA 管:從采血至運輸?shù)街行膶嶒炇译x心處理至多不能超過2h,離心前臨時保存應暫放于2~8℃冷藏。分離血漿后,應立即豎直放置,冷凍血漿,-80℃冷凍最佳(或-20℃冷凍直至干冰運輸)。

      鼎晶生物已建立全流程質(zhì)控體系,最大限度保證患者樣本質(zhì)量安全,為患者提供最高效、最精確的檢測服務!

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