實驗步驟
實驗原理 1 挑取一個JM109單菌落于3ml LB(無抗生素)培養(yǎng)基中,37℃,180rpm培養(yǎng)過夜。 讓菌復蘇,進入對數(shù)期的早中期。此時更容易制得感受態(tài)細胞。 2 取0.4mL過夜培養(yǎng)物加入到40mL LB(無抗生素)培養(yǎng)基中,37℃250rpm大約2.5小時)。 減少達到所需亮的均所需繁殖的世代數(shù),以減少菌的變異。 3 取培養(yǎng)物置于40mL的滅菌離心管中,冰浴10min,4000rpm 4℃離心10min,棄上清。(將所有上清倒光,可以將離心管倒過來) 使細菌的生長停止,代謝減慢。因為這時已經(jīng)沒有培養(yǎng)基了,如果細菌仍有很高的代謝效率,則有大量細菌死亡。 4 菌體重懸于10mL 100mmol/L冰冷CaCl2 中,輕吹,4℃ 30min,4000rpm離心5min棄上清。 ),經(jīng)短時間420C熱激處理,促進細胞吸收DNA復合物。(一定要輕吹,這時細胞壁打開,十分脆弱)
5 菌體重懸于1mL 100mmol/L冰冷的CaCl2 中,輕吹,用于轉化。 除去所有的LB以及細胞破損后釋放出來的細胞內含物。防止細胞分裂,以致大量細胞死亡。(一定要輕吹,這時細胞壁打開,十分脆弱) 6 取感受態(tài)細胞100uL,加入2uLpET-21a質粒,冰浴30 min受體菌:感受態(tài)細胞100uL,加入2 uL無菌雙蒸水陰性對照:0.1mol/LCaCl2溶液100uL,加入2 uL陰性對照 第一個陰性對照是為了驗證LB中的抗生素有活性;第二個陰性對照是為了驗證CaCl2 溶液和pET-21a質粒未被污染。 冰浴是為了降低細胞代謝率,防止細胞大量死亡。 7 熱激 42oC,90s 在低溫處理后,熱激,可以使細胞壁熱脹冷縮,再低溫,使細胞壁上黏附的質粒進入細胞體內。 8 冰浴2 min 9 加入800 uL 無抗生素的 LB,37℃復蘇1h 用LB復蘇細胞,使細胞恢復活力,從而使細胞中的質粒表達抗抗生素的基因,只有這樣才能使轉化成功的細菌在有抗生素的LB平板上生長。 10 取100ul細胞直接在含50ug/mL Carbenicillin(羧芐西林)的LB培養(yǎng)基上鋪平板,將平皿放置37 oC溫箱30min至液體被吸收。倒置平皿37 oC培養(yǎng)過夜,出現(xiàn)菌落。 這些菌落為轉化成功的菌落,而對照組應該沒有菌落。在目的菌落的旁邊有可能出現(xiàn)衛(wèi)星菌落,這是因為畝的菌落的抗性基因似的菌落周圍的抗生素失效,長出了轉化為成功的菌落。用羧芐西林因其對酸穩(wěn)定、不易被細菌降解,所以可以降低衛(wèi)星菌落的數(shù)量。 因為抗生素高溫易失活,所以應等到LB600C時(熱而不燙),加入抗生素。 |
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